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組織培養(yǎng)常遇到的問題-組培

文章作者:騰昊科技 發(fā)布時(shí)間:2022-01-22 20:56:08 瀏覽次數(shù):10143


1. 培養(yǎng)基配制注意事項(xiàng)

植物組織培養(yǎng)最常用MS培養(yǎng)基,包含十幾種化合物。有些化合物相遇會(huì)發(fā)生化學(xué)反應(yīng)產(chǎn)生沉淀,影響培養(yǎng)基的營養(yǎng)成分,所以MS培養(yǎng)基需要配制多種高倍母液。

 

配制母液時(shí),尤其涉及大量元素的母液時(shí),一定要等一種成分溶解之后,再緩慢的添加另一種成分;切記一鍋煮,即不能將各種化合物一齊添加進(jìn)去。

 

2. 滅菌后培養(yǎng)基不凝膠或者凝膠偏軟

植物凝膠、瓊脂都對酸性條件敏感,pH 值低于5很難成膠或凝膠偏軟,切記高壓滅菌前調(diào)節(jié)培養(yǎng)基 pH 值(5.5 - 6.0)。植物凝膠對二價(jià)陽離子濃度有要求,也就是相對于 MS 培養(yǎng)基,1 / 2 MS 培養(yǎng)基中植物凝膠要適當(dāng)增加用量。


 

另外滅菌后,倒出培養(yǎng)基前一定將培養(yǎng)基搖勻(帶防燙手套),因?yàn)榄傊芏却蟮讓雍扛?,容易造成培養(yǎng)基強(qiáng)度不均勻。

 

3. 水解酪蛋白有酸水解和酶水解之分,在使用過程中有無區(qū)別?

水解酪蛋白對胚狀體、不定芽的分化有良好的促進(jìn)作用,通常用量在 500 mg/L,不管是酸解還是酶解,作用都是一樣的,酶解更有利于發(fā)揮其作用。

 

4. 怎么溶解組培常用植物激素?

IAA、IBA、GA、玉米素、多效唑等應(yīng)先溶解于少量 95% 的乙醇中,再加水定容配制成母液。

 

如有結(jié)晶析出,可考慮用 1 / 10 體積的乙醇溶解后再定容;2,4 -D 易溶于堿性水溶液,可用少量 1mol/L 的 NaOH 溶液溶解后再慢慢加水定容;KT 和 6 -BA 先用少量的 HCL 溶解,再加水定容到一定的濃度。

 

5. 細(xì)胞分裂素使用濃度?

一般情況下在培養(yǎng)基中加入 0.1~10.0 mg/L 的細(xì)胞分裂素(6 -BA/KT/ZT),多數(shù)用 1.0~2.0 mg/L,KT 濃度為 0.5~2 mg/L,濃度要根據(jù)實(shí)驗(yàn)材料來調(diào)整。細(xì)胞分裂素可以單獨(dú)使用也可以與細(xì)胞生長素配合使用。


 


6. 哪些植物激素能高壓滅菌,哪些不能高壓滅菌?

IBA、NAA、6 -BA、2,4 -D 可高溫高壓滅菌。IAA、GA3、茉莉酸等不可高溫高壓滅菌,否則會(huì)分解失效,該類植物激素配制母液后需用 0.22 微孔濾膜過濾除菌,待培養(yǎng)基冷卻(50 - 60℃)后尚未凝膠前加入混勻。

 

7. 培養(yǎng)基的 pH 值會(huì)凝膠硬度有無影響?

有影響。

 

若將培養(yǎng)基 pH 值調(diào)的過高(大于 6),則培養(yǎng)基偏硬,增加接種的阻力,會(huì)對外植體造成損傷。

 

若將培養(yǎng)基 pH 值調(diào)的過低(小于 4.5),則培養(yǎng)基不能凝固,起不到固定外植體的作用。一般將培養(yǎng)基的 pH 調(diào)節(jié)至 5.5~6.0 為宜。

 

8. 滅菌過程是否影響培養(yǎng)基的 pH 值?

培養(yǎng)基中的蔗糖和激素在高溫滅菌過程中容易酸化,培養(yǎng)基 pH 值滅菌后會(huì)有所下降,滅菌前培養(yǎng)基的 pH 值偏低可能導(dǎo)致培養(yǎng)基不凝或偏軟。要求偏酸性的培養(yǎng)基可適當(dāng)增加瓊脂或植物凝膠的用量。

 

9. 應(yīng)用 75% 的酒精進(jìn)行種子消毒的過程中需要注意哪些問題?

種子在消毒過程中使用 75% 的酒精應(yīng)慎重,酒精滲透力極強(qiáng),消毒時(shí)間過長會(huì)直接影響種子發(fā)芽率,所以建議消毒時(shí)間不應(yīng)超過 1 min。

 

10. 原始繁殖材料的消毒

組培原始繁殖的外植體消毒,直接影響整個(gè)培養(yǎng)過程。

 

從室外采回來的外植體需進(jìn)行消毒,首先用自來水沖洗外植體,沖洗時(shí)間可根據(jù)采集部位不同而定,一般在 5~15 分鐘即可;在超凈臺(tái)中進(jìn)行藥劑的處理,常用的藥劑處理有 70% 的乙醇溶液、9% 的次氯酸鈉溶液和 0.1~0.2% 的升汞溶液,具體可根據(jù)實(shí)驗(yàn)材料而定。應(yīng)注意的是經(jīng)升汞滅菌的外植體必須用無菌水沖洗 6~8 次。


 


11. 怎樣處理植物組織培養(yǎng)過程中出現(xiàn)的各種污染?

植物組織培養(yǎng)過程中的污染來源主要分為 3 種:真菌、細(xì)菌、組織培養(yǎng)過程中的污染源

在操作過程中,難免有菌落入培養(yǎng)基或植物材料上導(dǎo)致污染。不正確操作也會(huì)增加污染幾率。

預(yù)防措施:通風(fēng)、保持室內(nèi)空氣干燥、紫外殺菌等。污染物品和污染培養(yǎng)基不要在培養(yǎng)室近距離開瓶洗刷。

 

污染原因判斷:

1)培養(yǎng)基污染 

若污染菌類是零星分散在培養(yǎng)基中,可確定是人為引起的污染。比如:培養(yǎng)基滅菌不徹底,開瓶時(shí)間過長,滅菌后存放時(shí)間過長,高溫蒸汽滅菌器的溫度、壓力、時(shí)間沒有正確設(shè),過濾滅菌過程中濾膜孔徑選擇,過濾滅菌器的滅菌處理,過濾滅菌操作等。這些均會(huì)影響培養(yǎng)基的滅菌效果。

措施:嚴(yán)格按照實(shí)驗(yàn)要求,滅菌規(guī)程操作。

 

2)外植體污染 

若污染菌類是從材料周圍長起,且發(fā)生在 5 天以后,則說明是材料帶的內(nèi)生菌。可能是接種用具滅菌不徹底,接種時(shí)材料被污染;

若從培養(yǎng)基以下開始長菌,發(fā)生時(shí)間較早,且有從里向外的趨勢,則說明是切口引起的污染,原因可能是未剪去兩個(gè)切口或者雖剪去切口但是所用器具帶菌;或者是未及時(shí)發(fā)現(xiàn)污染苗,接種過程中引起交叉污染;

措施:取材時(shí)應(yīng)仔細(xì)選擇,以減少污染的發(fā)生。

 

3)操作環(huán)節(jié)污染 

接種室是否清潔、干燥、密封,是否經(jīng)常用紫外燈照射、甲醛熏蒸、70% 的酒精噴霧殺菌等;超凈工作臺(tái)擺放物品雜亂,長時(shí)間不換濾網(wǎng),導(dǎo)致凈化能力降低;接種用具滅菌不徹底引起污染;操作不正確等。

措施:每次接種前半個(gè)小時(shí),用 20% 的新潔爾擦洗室內(nèi)設(shè)備、工作臺(tái)面,再用紫外燈照射 20 min,噴灑 70% 的乙醇進(jìn)行消毒。除了培養(yǎng)基、接種材料、器具和用具保證無菌外,同時(shí)在接種時(shí)還需要嚴(yán)格進(jìn)行無菌操作。

措施:

1)真菌污染后,如果已形成孢子,則必須經(jīng)高壓滅菌后扔掉;若是細(xì)菌污染,只要及時(shí)發(fā)現(xiàn),將材料上部未感染菌的部分剪下轉(zhuǎn)接,材料仍可以用。

2)用抗生素等殺菌藥劑處理。至今還未發(fā)現(xiàn)哪種抗生素能夠?qū)Ω鞣N菌都有效,并且常影響植物材料的正常生長分化。另一些藥劑,雖有的殺菌效果好,但往往容易引起鹽害,也無法利用。

 

12. 外植體的選擇

為了使接種后的誘導(dǎo)得以成功,選擇的外植體應(yīng)該是幼嫩、處于生長旺盛時(shí)期的,選擇的外植體的體積不能過小,如若過小則會(huì)影響愈傷組織的形成,從而影響進(jìn)一步的分化。因此,一般接種的外植體體積在 0.5~1.0 cm2 的范圍內(nèi)即可。最適的為莖尖、帶芽、莖段,也可以利用葉子、子葉、根段、花器官組織等。

 

13. 植物莖段組織培養(yǎng)需要注意哪些問題

以莖段進(jìn)行組織培養(yǎng)比較容易,一般取植物的嫩莖切段作為外植體,切成 0.5~1 cm 長的小段進(jìn)行接種,保證每個(gè)莖段有一個(gè)芽點(diǎn)和一片葉子,將芽點(diǎn)部位以下垂直插入培養(yǎng)基凝膠中進(jìn)行生根培養(yǎng)。

 


14. 外植體接種需要注意的操作事項(xiàng)

接種前首先進(jìn)行滅菌消毒,接種所用的鑷子、解剖刀、剪刀等工具需要提前高溫高壓滅菌,提前 10 分鐘打開超凈工作臺(tái),滅紫外 15~20 min,操作人員要用 75% 的酒精棉球擦手、工作臺(tái)和器皿,解剖刀和鑷子等隨時(shí)擦酒精灼燒,晾涼后備用。

在無菌培養(yǎng)皿或?yàn)V紙上切割外植體,接種到培養(yǎng)基表面,注意瓶口傾斜接近酒精燈火焰。

 

15. 組織培養(yǎng)中材料褐化現(xiàn)象

不同品種以及生理狀態(tài)引起的褐化狀態(tài)不同。培養(yǎng)基過高濃度的無機(jī)鹽及高水平細(xì)胞分裂素會(huì)使褐化現(xiàn)象加重。培養(yǎng)條件不當(dāng),例如光照過強(qiáng)、溫度過高、培養(yǎng)時(shí)間過長等,均可使多酚氧化酶的活性提高,從而加重外植體的褐變程度。

 

防治措施:

選擇合適的外植體:選擇生長處于旺盛的外植體,可以使褐變現(xiàn)象明顯減輕。

合適的培養(yǎng)條件:無機(jī)鹽成分、植物生長物質(zhì)水平、適宜溫度、及時(shí)繼代培養(yǎng)均可以減輕材料的褐變現(xiàn)象。

使用抗氧化劑:在培養(yǎng)基中,使用半胱氨酸、抗壞血酸、PVP 等抗氧化劑能夠較為有效地避免或減輕很多外植體的褐變現(xiàn)象。另外使用 0.1%~0.5% 的活性炭對防止褐變也有較為明顯的效果。

連續(xù)轉(zhuǎn)移:對容易褐變的材料可間隔 12~24 小時(shí)的培養(yǎng)后,再轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)基上,這樣經(jīng)過連續(xù)處理 7~10 天后,褐變現(xiàn)象便會(huì)得到控制或大為減輕。

 

16. 材料玻璃化問題

植物材料不斷地進(jìn)行離體繁殖時(shí),有些培養(yǎng)物的嫩莖、葉片往往會(huì)呈半透明、水跡狀,這種現(xiàn)象通常稱為玻璃化。

 

玻璃化為試管苗的生理失調(diào)癥,試管苗生長緩慢、玻璃化的嫩莖不宜誘導(dǎo)生根,繁殖系數(shù)有所下降。當(dāng)培養(yǎng)基上細(xì)胞分裂素水平較高時(shí),容易出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象。

 

愈傷組織的玻璃化問題主要表現(xiàn)在培養(yǎng)過程中愈傷組織松散、脆易碎。葉子或是長出的愈傷一段時(shí)間后在其周圍出現(xiàn)水漬化,繼而影響整個(gè)培養(yǎng)基。

 

防治措施

在培養(yǎng)基中添加少量聚乙烯醇、脫落酸等物質(zhì),降低培養(yǎng)基中細(xì)胞分裂素含量及含氮化合物的用量,選用低 NH4 +水平的 B5 培養(yǎng)基,都能夠在一定程度上減輕玻璃化的現(xiàn)象發(fā)生;

增加光照,對減輕試管苗玻璃化的現(xiàn)象有明顯的作用;在培養(yǎng)基中添加活性炭、馬鈴薯汁、間苯三酚等可有效的減輕和防止玻璃化。

 

17. 材料水浸狀、變色、壞死、莖斷面附近干枯

可能原因:表面殺菌劑過量,消毒時(shí)間過長,外植體選用不當(dāng)(部位或時(shí)期)。

改進(jìn)措施:調(diào)換其他殺菌劑或降低濃度,縮短消毒時(shí)間,試用其他部位,生長初期取材。

 

18. 材料長期培養(yǎng)幾乎無反應(yīng)

可能原因:培養(yǎng)基不適合,生長素的選擇和用量不當(dāng),植物激素對生長發(fā)育和生理過程的調(diào)節(jié)作用,往往不是某一種植物激素的單獨(dú)效果;環(huán)境溫度不適宜。

 

改進(jìn)措施:

更換培養(yǎng)基或調(diào)整培養(yǎng)基成分,尤其是調(diào)整鹽離子濃度;

調(diào)整激素的種類與配比,增加生長素用量,例如使用人工合成的生長素類似物 2,4 -D 等可有效促進(jìn)細(xì)胞分裂和伸長,新器官的分化和形成;

調(diào)整培養(yǎng)溫度等環(huán)境條件。

 

19. 愈傷組織生長過旺疏松

可能原因:由于培養(yǎng)基中激素添加過量,培養(yǎng)室溫度偏高,礦物質(zhì)等無機(jī)鹽含量不當(dāng)?shù)纫蛩匾鸬摹?o:p>

 

改進(jìn)措施:根據(jù)不同的品種、不同組織、不同器官,應(yīng)適當(dāng)減少激素用量,適當(dāng)降低培養(yǎng)溫度,調(diào)整無機(jī)鹽(尤其是銨鹽)含量,適當(dāng)提高瓊脂用量增加培養(yǎng)基硬度,避免愈傷組織生長過旺和疏松現(xiàn)象發(fā)生。

 

20. 愈傷組織生長緩慢太緊密

可能原因:細(xì)胞分裂素和生長素的用量過多,糖濃度過高。

改進(jìn)措施:減少細(xì)胞分裂素用量,調(diào)整細(xì)胞分裂素與生長素比例,降低糖濃度。

 

21. 愈傷組織分化率低,畸形,分化出的芽多為葉狀芽或叢芽,芽生長困難,不易成苗。培養(yǎng)時(shí)間長時(shí),再次愈傷組織化

可能原因:生長素用量偏高,溫度偏高。

改進(jìn)措施:減少生長素用量,可以通過分化培養(yǎng)時(shí)在培養(yǎng)基中添加 GA3(濃度在 0.5~2 mg/L 之間)解決,并適當(dāng)降低愈傷組織的培養(yǎng)溫度。

 

22. 叢生苗過于細(xì)弱,不適于生根或移栽

可能原因:細(xì)胞分裂素濃度過高或赤霉素使用不當(dāng),產(chǎn)生過多的不定芽;溫度過高,光照短,光強(qiáng)不足;不及時(shí)的轉(zhuǎn)移和分切,生長空間小。

 

改進(jìn)措施:

減少細(xì)胞分裂素用量,免用赤霉素;

延長光照時(shí)間,增強(qiáng)光照;

及時(shí)轉(zhuǎn)接;

降低接種密度;

更換透氣的封口膜等。

 

23. 組織培養(yǎng)過程中出現(xiàn)黃化

可能原因:培養(yǎng)基中 Fe 的含量不足,各種礦質(zhì)營養(yǎng)不均衡;培養(yǎng)環(huán)境通氣不良,瓶內(nèi)有害氣體積累(乙烯、氨氣、甲醛)等會(huì)引起植物材料黃化脫落;激素配比不當(dāng);糖用量不足或長時(shí)間不轉(zhuǎn)移;pH 值變化過大;培養(yǎng)溫度不適;光照不足等。

 

改進(jìn)措施:

改善組培條件,在配制培養(yǎng)基過程中檢查儀器設(shè)備是否準(zhǔn)確;

降低組培苗的接種密度,及時(shí)轉(zhuǎn)接培養(yǎng)物;

使用透氣的封口膜改善瓶內(nèi)通氣狀況;

適當(dāng)調(diào)節(jié) pH 值、激素配比和無機(jī)鹽濃度;

控制培養(yǎng)室內(nèi)溫度,適當(dāng)增加光照。

 

24. 植物組培培養(yǎng)基都有哪些?

MS 培養(yǎng)基:1962 年穆拉辛格和斯庫格為煙草細(xì)胞培養(yǎng)而設(shè)計(jì),其中硝酸鹽的濃度高,適合植物原生質(zhì)體、細(xì)胞和組織培養(yǎng)。

 

B5 培養(yǎng)基:1968 年甘伯爾格為大豆細(xì)胞培養(yǎng)而設(shè)計(jì),銨的濃度低。適合木本植物的組織和細(xì)胞培養(yǎng)。

 

富鹽平衡培養(yǎng)基:是目前使用最廣泛的一類,特點(diǎn)是:無機(jī)鹽濃度高,微量元素種類齊全,濃度高;元素間比例適當(dāng),離子平衡性好,具有較強(qiáng)的緩沖能力、穩(wěn)定性好、營養(yǎng)豐富,一般培養(yǎng)時(shí)無需再加入有機(jī)成分。

 

高硝態(tài)氮培養(yǎng)基:代表性培養(yǎng)基有 B5、N6、SH。特點(diǎn)是:硝酸鉀濃度高,氨態(tài)氮濃度低,含有較高濃度的硫胺素(VB1)。

 

中鹽培養(yǎng)基:大多是在 MS 培養(yǎng)基基礎(chǔ)上進(jìn)行改良設(shè)計(jì)。特點(diǎn)是:大量元素?zé)o機(jī)鹽為 MS 的一半,微量元素種類減少、含量增高。維生素種類比 MS 增多,例如增加了生物素、葉酸等。

 

低鹽培養(yǎng)基:無機(jī)鹽、有機(jī)成分含量濃度低,多用作生根培養(yǎng)的培養(yǎng)基。

 


25. 木本植物(油料植物)組織培養(yǎng)中遇到再生苗無法生根時(shí)怎么辦?

一般常用的 1 / 2MS 或者 1 / 2WPM 基本能夠滿足。如果增殖用的都生產(chǎn)正常,到生根的時(shí)候出現(xiàn)落葉,只能通過排除法一樣樣分析。

 

首先看是不是培養(yǎng)溫度太高,使用瓶蓋后透氣性差,導(dǎo)致乙烯積累。其次,可以適當(dāng)添加少量分裂素,或者更換生長素,以及多種生長素混合使用。

 

26. 培養(yǎng)基中添加糖類作為碳源物質(zhì),有何重要作用?

碳源為植物細(xì)胞提供能量來源,蔗糖較葡萄糖能更好地調(diào)節(jié)培養(yǎng)基內(nèi)的滲透壓。微生物生長所需的碳源最常用的是葡萄糖。采用蔗糖作為培養(yǎng)基的碳源,可一定程度上減少微生物的污染。

 

生長素和蔗糖濃度決定愈傷組織中維管束的類型與數(shù)量。

 

27. 用于植物原生質(zhì)體制備的材料,以及常用的滲透壓調(diào)節(jié)劑

用于植物原生質(zhì)體的材料需要選取生長旺盛的細(xì)胞,幼嫩的組織。無菌試管苗的葉片、胚軸及子葉、花藥,以及愈傷組織(懸浮細(xì)胞)等。

 

常用的調(diào)節(jié)原生質(zhì)體滲透壓的穩(wěn)定劑主要有甘露醇、山梨醇、葡萄糖、蔗糖等。滲透壓濃度一般為 0.3~0.8 mol/L。

 

28. 組培苗移栽需要注意的問題

在移栽前打開三角瓶的封口膜,煉苗 3~5d 后取出小苗,用流水洗凈根部的培養(yǎng)基,然后移栽到盛有滅過菌的蛭石營養(yǎng)缽中過度一下,但要注意不可直接向營養(yǎng)缽中澆營養(yǎng)液(容易長菌),用透明的塑料薄膜罩住小苗 3~5d 后移栽到土里。

 

29. 光照強(qiáng)度多少 lux 是如何計(jì)算的

光照強(qiáng)度 = 光通量/單位面積。Lux 的換算比較抽象,一般以燭光為計(jì)算單位,現(xiàn)在所用的以電源發(fā)光的光源,記作國際燭光,即 25 瓦特的電燈其光強(qiáng)度等于 25 國際燭光。1 標(biāo)準(zhǔn)燭光 = 10.76 Lux。

 

30. LED 光源在植物組織培養(yǎng)中的選擇

光是植物生長中最重要的環(huán)境因子之一,并不是所有的光都有助于植物的光合作用。LED 光源 460nm 左右的藍(lán)光和 660nm 左右的紅光是植物最需要的光波,對植物的生長發(fā)育起著關(guān)鍵性的作用。

 

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